BIOQUIMICA

AMILASA

APLICACIÓN

CONDICIÓN MUESTRA

No se requiere ninguna preparación especial del paciente.

ALBUMINA

Los caninos, felinos, equinos y rumiantes poseen una gran capacidad de reserva para su producción, limitando su empleo como indicador temprano de la disfunción hepática.

No se requiere ninguna preparación especial del paciente.

Hemólisis con concentraciones de hemoglobina libre de 1 a 4 g/l, ocasiona una desviación en la albúmina de 6% a 26%.

No se requiere ninguna preparación especial del paciente.

No utilizar muestras hemolizadas.

Las anomalías guardan relación con la determinación de los ácidos biliares séricos.

Las derivaciones hepáticas congénitas o adquiridas, la obstrucción del colédoco y la colangiohepatitis también aumentan el amoniaco en sangre.

Recoja la muestra utilizando los procedimientos de laboratorio estándar

Mantenga la muestra en hielo hasta el momento del análisis

Concentraciones de glucosa de 600 mg/dl pueden provocar un descenso de 40 umol/L en la concentración de amoniaco.

Las causas más comunes de aumento del anión Gap en perros y gatos son la acidosis metabólica, la insuficiencia renal, la diabetes mellitus, la cetosis o el shock hipovolémico.

Si el aumento aniónico no haya explicación en tales patologías, habrá que considerar la posibilidad de intoxicación (etilenglicol, salicilatos, metaldehídos), deshidratación, terapia farmacológica (penicilina). Sirve para evaluar el pronóstico de la acidosis metabólica.

No se requiere ninguna preparación especial del paciente.

Enviar lo más pronto posible al laboratorio.

No se requiere ninguna preparación especial del paciente.

No utilizar muestras hemolizadas.

Niveles elevados de bilirrubina conjugada sugieren enfermedad hepática. Niveles aumentados de bilirrubina no conjugada en presencia de anemia sugieren hemólisis.

No se requiere ninguna preparación especial del paciente.

No utilizar muestras hemolizadas y/o lipémicas.

Fármacos como hallopuridol, esteroides anabólicos, antibióticos, ácido ascórbico y diuréticos aumenta la concentración total de bilirrubinas

No se requiere ninguna preparación especial del paciente.

Enviar lo más pronto posible al laboratorio.

•  El semen se recolecta mediante estimulación manual del pene canino a través del prepucio o usando una vagina artificial.

• En la mayoría de los perros con experiencia reproductiva previa, la recolección puede hacerse sin hembra estimuladora.
• Los machos inexpertos o tímidos pueden necesitar la presencia de una perra en estro como estímulo.
• Una perra dócil en anestro también puede servir como estimulación.
• La presencia de una perra en estro o el uso de la feromona sintética metil-p-hidroxi benzoato (Sigma Chemical) pueden mejorar la calidad del eyaculado.
• El semen canino se eyacula en tres fracciones. La primera es clara con un volumen de varias gotas (hasta 2 ml). La segunda fracción es rica en espermatozoides, con volumen de 0.5 a 5 ml. La tercera y más grande (hasta 20 ml) es liquido prostático. El líquido prostático normal es claro y fácil de diferenciar de la fracción lechosa rica en espermatozoides.
• Para la evaluación sistemática del semen, se debe recolectar solo una cantidad de líquido prostático suficiente para asegurar que el animal a eyaculado el total de la porción rica en espermatozoides.
• El volumen total varía con la técnica, la frecuencia, la edad. El volumen no se correlaciona con la fertilidad, a menos que el animal no pueda eyacular.
• El área de recolección debe ser tranquila, hallarse libre de distracciones y tener un piso no resbaladizo.
• La muestra de semen se debe manipular con cuidado.
• Todo el equipo debe estar limpio y libre de contaminantes (por ejemplo agua, o exceso de lubricante) que puedan afectar la viabilidad de los espermatozoides.
• La muestra debe protegerse del shock térmico.
• Enviar lo más pronto posible al laboratorio.

Con la excepción del animal en crecimiento o el paciente con enfermedad esquelética, la hiperactividad de FAL sérica es de origen hepatobiliar. 

Antibióticos como la tetraciclina interfieren considerablemente con el análisis.

El manitol puede aumentar los resultados del fósforo.

Las fructosaminas permanecen en sangre actuando como memoria glicémica, representando en forma retrospectiva un índice de la media de las fluctuaciones de la concentración de glucosa 2 a 3 semanas previas a la realización del análisis, que coincidirá con la vida media de las proteínas en circulación hasta ser metabolizadas.

Dado que el dosaje de fructosaminas es una medida del estado metabólico retrospectivo del paciente, es que conviene incluirlo dentro del esquema de monitoreo del paciente diabético.

El uso de Fenobarbital y en el último tercio de la gestación pueden aumentar los valores plasmáticos.

No utilizar muestras extremadamente lipémicas.

Para evaluar la osmolalidad se requiere analizar en una muestra de suero: sodio, potasio, glucosa y nitrógeno ureico sanguíneo.

La hipoalbuminemia con concentraciones normales a elevadas de globulinas sugiere producción reducida, perdida incrementada o secuestro de albúmina. La pérdida elevada de albúmina ocurre en la enfermedad glomerular.

La inflamación y ciertas enfermedades (peritonitis infecciosa felina, erlichiosis canina) causan gammapatias policlónales.

Las enfermedades de las células plasmáticas y de los linfocitos (linfosarcoma, mieloma múltiple) causan gammapatias monoclonales.

CITOQUIMICO DE LIQUIDOS CORPORALES 

LÍQUIDOS CORPORALES

Aplicación de la prueba

La evaluación de los líquidos corporales ayuda a interpretar el diagnóstico etiológico o la clasificación general de un proceso subyacente; los líquidos se someten a examen citológico, bioquímico y cultivo si es necesario o es requerido.

El análisis de líquido pericárdico, pleural y peritoneal comprende la medición de propiedades fisicoquímicas y descripción de las células presentes en los extendidos coloreados.

CITOQUIMICO DE ORINA-PARCIAL DE ORINA-UROANALISIS.

Aplicación de la prueba.

La evaluación macroscópica, microscópica y bioquímica de la orina permite apreciar y evaluar la integridad del sistema renal, desde el riñón hasta los conductos de transporte de orina como la uretra interna, externa y la vejiga, incluso suministrar información pertinente a los órganos genitales internos dependiendo de la especie animal.

Examen físico

• Color: Debido a que la intensidad del color depende de la cantidad de agua en la que los pigmentos son excretados, se deberá interpretar de acuerdo a la densidad urinaria al igual que las otras características del examen urinario. El color normal de la orina es amarillo pálido, amarillo o amarillo ámbar.
• Aspecto: En la mayoría de las especies la orina recientemente eliminada es clara o transparente. La orina concentrada es más probable que sea turbia que una orina diluida. La causa de orina turbia generalmente se explica mejor por evaluación del sedimento urinario
• Densidad: Mide el poder concentrador y diluyente del riñón en su esfuerzo por mantener la homeostasis del organismo

Examen químico

• pH: El pH urinario puede usarse como un índice crudo del balance ácido-básico del cuerpo
• Proteínas: su interpretación se debe correlacionar con la densidad urinaria. Las proteínas urinarias están compuestas por una cantidad variable de proteínas plasmáticas, proteínas provenientes del tracto urinario y del tracto genital. La evaluación de la proteína urinaria está incluida como parte del examen completo de orina, porque cuando se interpreta junto con otros hallazgos clínicos y de laboratorio con frecuencia ayudan en la detección y localización de los desórdenes fundamentales
• Glucosa: La glucosuria en general se debe a hiperglucemia que excede el umbral renal de reabsorción de glucosa
• Cuerpos cetónicos: Deben ser negativos, pueden aparecer en cetoacidosis, ayuno, emanciación. La diabetes mellitus no controlada es la forma de cetonuria más común encontrada en perros y gatos
• Sangre oculta: Detecta hemoglobina, mioglobina y glóbulos rojos, la hematuria es la causa más común de un hallazgo positivo de sangre oculta
• Bilirrubina: los perros (en especial los machos) pueden tener una discreta bilirrubinuria si la densidad urinaria es igual o mayor a 1.030. Los gatos normales no presentan bilirrubinuria. Las causas más comunes de bilirrubinuria son la enfermedad hepática, obstrucción post hepática del conducto biliar y enfermedades hemolíticas. La bilirrubinuria puede ser un indicador temprano de desórdenes que ocurren naturalmente con el potencial de inducir ictericia. Sin embargo, la falta de bilirrubinuria no excluye desórdenes asociados con el metabolismo de bilirrubina. La detección de cantidades anormales de bilirrubina en la orina se puede usar como un índice crudo de hepatotoxicidad causado por agentes terapéuticos potencialmente tóxicos.
• Urobilinógeno: A diferencia de la situación en el hombre, el examen de rutina del urobilinógeno no es particularmente útil en animales, se incluye en las pruebas de rutina debido a que viene incluido en las tiras reactivas que se utilizan habitualmente.
• Leucocitos: La prueba que se emplea para detectar leucocitos es insensible en animales, estas células deben ser evaluadas con examen microscópico del sedimento
• Nitritos: La evaluación clínica de esta prueba en perros y gatos revela que no detecta la bacteriuria significativa en forma consistente, por lo tanto no es una prueba muy útil, da un número muy alto de falsos negativos

Examen microscópico – Estudio del sedimento.

• Leucocitos: En condiciones normales se encuentran leucocitos escasos (2-3/ campo). La presencia de leucocitos señala inflamación. La infección urinaria es la causa más común de piuria, los cálculos y la neoplasia son otras etiologías comunes.
• Eritrocitos: Descartando traumatismos en la toma de muestra, la hematuria se puede observar en infecciones, cálculos, otras inflamaciones no sépticas, coagulopatias, neoplasias, quistes, infartos renales, parásitos urinarios, estro en las hembras.
• Cilindros: Los cilindros son estructuras compuestas principalmente de mucoproteínas denominadas de Tamm-Horsfall, la cual es secretada localmente por las células epiteliales que tapizan las asas de Henle, túbulos contorneados dístales y túbulos colectores. La presencia de cilindros respalda el diagnóstico de enfermedad renal, pero su ausencia no la descarta. El tipo de cilindro provee cierta información acerca de proceso nosológico.
• Cristales: La evaluación de los cristales en la orina puede ayudar en la detección de desórdenes que predisponen a los animales en la formación de urolitos, estimación de la composición mineral de los urolitos, y en la evaluación de la efectividad de los protocolos médicos iniciados para disolver o impedir la urolitiasis. La cristaluria puede presentar un factor de riesgo para la urolitiasis, sin embargo la detección de cristales no es sinónimo de urolitos y los síntomas clínicos asociados con ellos; ni los cristales en la orina son una evidencia irrefutable de una tendencia en la formación de cálculos.
• Bacterias: Se pueden observar cocos o bacilos en orinas centrifugadas o no, si las hay en suficiente cantidad. El significado de la presencia de bacterias está relacionado con el método de colección y el tiempo de tomada la muestra; la presencia de bacterias en muestras viejas o que permanecen al medio ambiente por largo tiempo no tienen significado clínico. Si la orina se colectó asépticamente por cistocentesis o cateterización y se observan bacterias indica que hay infección en los riñones o vejiga; puede haber gran número de bacterias en cistitis, pielonefritis o cualquier infección bacteriana del tracto genitourinario. Sin embargo hay que tener en cuenta que la falta de detección de bacterias en el sedimento no excluye su presencia.
• Células epiteliales: Las células epiteliales renales se encuentran normalmente en número escaso (< 5 células por campo); mayores cantidades podrían indicar enfermedad de los túbulos renales. Las células epiteliales de transición se originan de la pelvis renal, vejiga urinaria y uretra. Cuando se observan en números mayores de 5/c pueden indicar inflamación o neoplasia de los sitios indicados anteriormente. Las células epiteliales escamosas se originan de la vagina y uretra distal y podrían indicar inflamación de esos sitios. Células epiteliales neoplásicas. Se pueden observar en pacientes con carcinoma de células de transición, rabdomiosarcoma. Rara vez se ven pacientes con carcinoma de células renales.
• Levaduras: Las levaduras y hongos generalmente son contaminantes. Pueden ocurrir infecciones con Cándida albicans, especialmente en pacientes con infecciones del tracto urinario resistentes que han sido tratados sin éxito con una variedad de agentes antimicrobianos por tiempo prolongado
• Parásitos: Son indicativos de infección parasitaria en el sistema urinario

Condiciones de la muestra.

El método de recolección de la orina debe registrarse (directa, sonda, cistocentesis). La muestra debe ser recogida preferiblemente en las horas de la mañana, desechando la primera porción de la misma

Use un recipiente desechable, nuevo, limpio y seco con tapa rosca

El análisis debe realizarse en las dos horas siguientes a la obtención de la muestra, de lo contrario debe refrigerarse a 4° C.

Las bacterias desdobladoras de urea producen amoniaco que combinado con los H+ produce amonio, el cual aumenta el pH de la muestra

El aumento de pH descompone los cilindros y el material celular

La glucosa puede ser utilizada por las bacterias y presentar falsos negativos

La bilirrubina puede disminuir por acción de la luz solar

Los componentes celulares se deterioran con el tiempo y se altera la morfología

La glucosuria presenta reducción falsa en orinas refrigeradas, grandes cantidades de ácido ascórbico, tetraciclina.

La glucosuria presenta incrementos falsos por peróxido de hidrogeno, hipoclorito, lavandina, agentes farmacológicos como ACTH, glucagón, epinefrina, morfina y fenotiazinas.

Cetonuria presenta incrementos falsos por fenazopiridina, dimercaprol, aspirina, captopril, mesna, n-acetilcisteina y ácido valpróico.

Sangre oculta presenta reducción falsa en presencia de ácido ascórbico y captopril.

Proteinuria presenta aumento falso con fenazopiridina y clorhexidina.

Bacteriuria presenta reducción falsa con antibiótico- terapia reciente, contaminación de la orina con oxidantes (ej: hipoclorito).

LIQUIDO CEFALORRAQUÍDEO

Aplicación de la prueba.

El líquido cefalorraquídeo es un ultrafiltrado transparente del plasma que baña el exterior del encéfalo y la medula espinal. La patología de las superficies externas de estas estructuras puede causar cambios en el LCR, mientras las laceraciones morbosas más profundas en el tejido nervioso por lo usual no lo hacen.

Condiciones de la muestra.

Toma de muestra por médico especialista o entrenado.

Desinfecte con tintura de yodo al 2%.

El LCR se obtiene desde la cisterna cerebelobulbar, porque allí tiende a haber menor contaminación con sangre que cuando se realiza la punción lumbar.

Después de administrar anestésico, se coloca al paciente en decúbito lateral derecho si el clínico es diestro o en decúbito lateral izquierdo si es zurdo.

La cabeza y el cuello del paciente se llevan hasta el borde de la camilla (para permitir que el clínico pueda mover su mano sin restricciones durante la recolección) y se flexionan con moderación hacia el pecho.

Se necesita un ayudante para sostener con firmeza la cabeza y el cuello del paciente.

El punto de inserción de la aguja es el cruce de dos líneas imaginarias, una que conecta el borde anterior de cada ala del atlas y la otra, trazada desde la cresta occipital hasta encontrar la primera línea a un ángulo de 90°.

Se usa una aguja espinal de 1,5 pulgada, calibre 20 a 22.

La aguja se inserta perpendicular a la piel.

El canto de la mano usada para insertar la aguja se apoya en la cabeza del paciente para controlar con cuidado la inserción.

Al ingresar al espacio subaracnoideo se percibe una disminución repentina de la resistencia a la aguja.

Durante el procedimiento, el estilete se puede retirar varias veces para comprobar que se ha ingresado a este espacio.

Una vez que se ingresó en el espacio subaracnoideo, la recolección se realiza dejando fluir el líquido libremente dentro de un tubo con tapa roja y la muestra (1 ml) se envía para el análisis.

Se prefiere un tubo de tapa roja en lugar de uno con EDTA porque en general el LCR no contiene factores de la coagulación y el EDTA aumenta la concentración de proteínas medidas y diluye una muestra que ya tiene escasas células.

Coleccione de 1 – 2 ml de LCR en tubos estériles previamente rotulados.

Si no logra obtener suficiente líquido, envíe lo colectado al laboratorio de microbiología primero, si requiere cultivo.

Envíe inmediatamente al laboratorio.

Nunca refrigere el líquido cefalorraquídeo.

Si es requerido el cultivo, el LCR debe ser colectado en tubos estériles con medio de transporte (caldo tripticasa soya, suministrado por el laboratorio) con tapa rosca, no deben utilizarse tubos con tapones de algodón o de caucho.

En la requisición con los datos del paciente indique si ha habido antibioterapia previa.

LÍQUIDO PERICARDICO

Aplicación de la prueba

Suele haber solo una pequeña cantidad de líquido pericárdico. Un volumen aumentado puede estar provocado por inflamación, tumor o hemorragia.

El derrame de líquido a la cavidad pericárdica no está bien diferenciado como trasudado y exudado, de hecho la mayoría de los derrames pericárdicos son provocados por una lesión de los recubrimientos del mesotelio más que por factores mecánicos. El análisis de líquido pericárdico está básicamente enfocado a la parte microbiológica, su estudio Citoquímico sólo adquiere importancia ante la duda entre un derrame de origen bacteriano y uno de origen neoplásico. Normalmente el líquido es amarillo, traslucido fluido. Los distintos tipos de derrame y sus causas más frecuentes son:

Serosos: en insuficiencia cardiaca congestiva, hipoproteinemia (renal, hepática y nutricional).

Sero-sanguinolentos: traumatismo toráxico cerrado, infecciones, neoplasias, infarto agudo de miocardio.

Quiloso: quilopericardio cuando hay obstrucción del conducto toráxico y extravasación de sustancia lechosa desde los linfáticos pericárdicos hasta el pericardio.

Condiciones de la muestra.

• Toma de muestra por médico especialista o entrenado.
• Desinfecte con tintura de yodo al 2%.
• El catéter a menudo se inserta a través del quinto o sexto espacio intercostal derecho (es decir, la muesca cardíaca entre los lóbulos pulmonares).
• Se inyecta anestésico local a nivel de la pleura.
• Se usa un catéter de teflón sobre la aguja de calibre 12 a 16, de 4 a 6 pulgadas con dos o tres orificios suplementarios cortados con tijera en forma aséptica en la cara lateral.
• Es necesario emplear una tubuladura y una llave de tres vías en los perros de tamaño mediano y grande.
• Después de la preparación quirúrgica del sitio de penetración torácica, se realiza una pequeña incisión para facilitar el movimiento del catéter a través de la dermis.
• Durante el avance del catéter se obtiene un electrocardiograma (ECG); el contacto con el miocardio produce latidos ventriculares prematuros.
• La entrada al pericardio puede requerir una estocada aguda.
• El catéter se desplaza sobre la aguja dentro del saco pericárdico y la aguja se descarta.
• Depositar líquido en tubo seco (tapa roja)
• Envíe inmediatamente al laboratorio.
• Si es requerido el cultivo, el líquido debe ser colectado en tubos estériles con medio de transporte (caldo tripticasa soya, suministrado por el laboratorio) con tapa rosca, no deben utilizarse tubos con tapones de algodón o de caucho.
• En la requisición con los datos del paciente indique si ha habido antibioterapia previa.

LÍQUIDO PLEURAL

Aplicación de la prueba

El aumento de la cantidad de líquido pleural se define como derrame pleural; el estudio Citoquímico y bacteriológico del líquido pleural es la clave para hallar la etiología de dicho derrame.

Los derrames de líquido en la cavidad pleural, pueden formarse sobre la base de ultra filtración del plasma. Estos ultras filtrados se clasifican en Trasudados y Exudados.

Un trasudado es un derrame provocado por factores mecánicos que influyen en la formación y resorción del líquido como reducción de la albúmina del plasma, o incremento de la presión venosa.

Un exudado es un derrame provocado por una lesión de los recubrimientos del mesotelio, como por ejemplo infecciones bacterianas, enfermedades reumáticas, lupus eritematoso sistémico, neoplasias, etc.

La toracentesis es el procedimiento mediante el cual se extrae el líquido pleural.

Condiciones de la muestra

• Toma de muestra por médico especialista o entrenado.
• Desinfecte con tintura de yodo al 2%.
• La aguja con la jeringa acoplada se coloca dentro del tejido subcutáneo, en general se realiza en el séptimo u octavo espacio intercostal a nivel de la unión costocondral. La aguja penetra en el medio del espacio intercostal, evitando el margen caudal de la costilla, donde se encuentran los nervios y los vasos.
• La manera más adecuada de recolectar el líquido es con el animal de pie o en decúbito esternal.
• Se recomienda usar un catéter mariposa de 1 pulgada calibre 18 o 20 conectado a una llave de tres vías y a una jeringa de 20 a 35 ml.
• Se aplica una presión negativa ligera mientras la aguja se avanza con angulación. El líquido aparecerá en la jeringa tan pronto como la aguja penetre el revestimiento cavitario.
• La angulación de la aguja ayuda a evitar que el líquido potencialmente se derrame desde la cavidad en el tejido circundante.
• Envíe inmediatamente al laboratorio.
• Si es requerido el cultivo, el líquido debe ser colectado en tubos estériles con medio de transporte (caldo tripticasa soya, suministrado por el laboratorio) con tapa rosca, no deben utilizarse tubos con tapones de algodón o de caucho.
• Depositar líquido en tubo seco (tapa roja).
• En la requisición con los datos del paciente indique si ha habido antibioterapia previa.

LÍQUIDO PERITONEAL

Aplicación de la prueba

Como ocurre con el líquido pleural y pericárdico, el líquido peritoneal (ascítico) es un ultra filtrado de plasma, cuya formación depende del equilibrio entre la presión hidrostática capilar, la presión oncótica plasmática, la permeabilidad capilar y la resorción linfática.

Es importante clasificar el líquido como trasudado, exudado o trasudado modificado.

Condiciones de la muestra

• Toma de muestra por médico especialista o entrenado.
• Desinfecte con tintura de yodo al 2%.
• El abdomen se palpa inmediatamente antes de la abdominocentesis para prevenir la laceración de las estructuras viscerales.
• La vejiga debe vaciarse antes del procedimiento, en particular cuando se usan catéteres de calibre 14.
• En los pacientes con distensión abdominal tensa, la punción se realiza en la región lateral del abdomen (para evitar la formación de un seroma gravitacional en la línea media ventral).
• Si se sospecha peritonitis séptica, pero la abdominocentesis habitual no lo comprueba, la punción se debe efectuar en los cuatro cuadrantes.
• La guía ultra sonográfica presta ayuda cuando la recolección del líquido es difícil.
• En general, una aguja de calibre 22 – 20 de 1 pulgada o un catéter de teflón se acoplan a una tubuladura.
• La longitud de la tubuladura ayuda a evitar la laceración visceral si el paciente se mueve durante el procedimiento.
• La aguja con la jeringa acoplada se coloca dentro del tejido subcutáneo y se aplica una presión negativa ligera mientras la aguja se avanza con angulación. El líquido aparecerá en la jeringa tan pronto como la aguja penetre el revestimiento cavitario.
• La angulación de la aguja ayuda a evitar que el líquido potencialmente se derrame desde la cavidad en el tejido circundante.
• Depositar en tubo seco (tapa roja)
• Envíe inmediatamente al laboratorio.
• Si es requerido el cultivo, el líquido debe ser colectado en tubos estériles con medio de transporte (caldo tripticasa soya, suministrado por el laboratorio) con tapa rosca, no deben utilizarse tubos con tapones de algodón o de caucho.
• En la requisición con los datos del paciente indique si ha habido antibioterapia previa.

LÍQUIDO SINOVIAL

Aplicación de la prueba

El examen citológico del líquido sinovial proporciona información de utilidad clínica para la identificación de una serie de problemas articulares. Las indicaciones para obtener líquido sinovial incluyen:

1) Articulación caliente tumefacta sugestiva de un proceso infeccioso; 2) signos roentgengráficos sugestivos de un proceso articular degenerativo; el análisis del líquido sinovial se realiza para descartar un proceso inflamatorio concomitante

3) poliartritis. En este último grupo de anormalidades suelen afectarse múltiples articulaciones y el líquido sinovial de la articulación carpal por lo usual reflejará el proceso inflamatorio en las restantes articulaciones.

El análisis del líquido sinovial permite diferenciar entre inflamaciones no inflamatorias e inflamatorias; el examen del líquido articular puede ser útil en animales con fiebre de origen desconocido. Muchas enfermedades inmunomediadas comprometen a las articulaciones.

Pueden obtenerse cantidades muy pequeñas de líquido de la mayoría de las articulaciones normales; por ello, la recolección de volúmenes relativamente grandes sugiere derrame. Las enfermedades agudas e inflamatorias producen derrame, mientras que las crónicas y no inflamatorias provocan agrandamiento articular debido a hinchazón del tejido blando, pero con poco líquido.

Condición de la muestra

• El líquido sinovial se obtiene empleando una aguja calibre 23 a 25 acoplada a una jeringa de 3 ml.
• El procedimiento no es doloroso.
• El área sobre la articulación es rasurada y preparada en forma aséptica y el miembro se flexiona y extiende alternativamente a medida que la superficie articular se palpa hasta localizar un punto blando.
• La parte blanda es penetrada con la aguja y se aspiran con suavidad unas pocas gotas del líquido sinovial.
• En un paciente con un proceso inflamatorio puede ser posible extraer hasta 0,5-1 ml de líquido.
• La succión es liberada, la aguja extraída y el espécimen se emplea para preparar al menos dos extendidos para el examen citológico.
• Las preparaciones citológicas se realizan del mismo modo que los extendidos sanguíneos para recuentos diferenciales excepto que el porta extensor es arrastrado con lentitud hacia la gota, se deja que el líquido se disemine y luego aquel es movilizado lentamente alejándolo de la gota original.
• La extensión no debe alcanzar el extremo del portaobjetos.
• Dejar secar y enviar al laboratorio.
• Se debe tener la cautela de evitar que el preparado citológico no sea demasiado espeso.
• Las células son de evaluación difícil en las muestras espesas porque los núcleos se redondean complicando los recuentos diferenciales.
• Después que se prepararon los extendidos, se puede agregar parte del líquido sinovial a un tubo con EDTA (tapa lila) y otra porción en tubo sin anticoagulante (tapa roja), para evaluación bioquímica y microscópica.
• Si se obtiene poca cantidad de muestra, el examen citológico tiene predominio sobre el cultivo y éste lo tiene sobre el recuento celular.